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        標(biāo)準(zhǔn)品
        培養(yǎng)基
        培養(yǎng)基原料 霍亂弧菌診斷血清 大腸艾希氏菌診斷血清 志賀氏菌屬診斷血清 沙門氏菌屬診斷血清 標(biāo)準(zhǔn)血清,診斷血清 抗生素藥敏紙片 微生物配套試劑 微生物生化管 管裝培養(yǎng)基 即用型液體培養(yǎng)基 一次性培養(yǎng)基平板 顯色培養(yǎng)基 臨床培養(yǎng)基 菌種保存培養(yǎng)基 四環(huán)素檢定、厭氧亞硫酸鹽還原桿菌檢測培養(yǎng)基 維生素檢測培養(yǎng)基 一次性衛(wèi)生用品衛(wèi)生檢測培養(yǎng)基 罐頭食品商業(yè)無菌檢測培養(yǎng)基 飲用水及水源檢測培養(yǎng)基 藥品、生物制品檢測培養(yǎng)基 化妝品檢測培養(yǎng)基 動物細(xì)胞培養(yǎng)基 啤酒檢驗(yàn)培養(yǎng)基 軍團(tuán)菌檢測培養(yǎng)基 支原體檢測培養(yǎng)基 小腸結(jié)腸炎耶爾森氏菌檢驗(yàn)培養(yǎng)基 彎曲桿菌檢驗(yàn)培養(yǎng)基 產(chǎn)氣莢膜梭菌、肉毒梭菌、厭氧菌檢驗(yàn)培養(yǎng)基 阪崎腸桿菌檢驗(yàn)培養(yǎng)基 溶血性鏈球菌檢測培養(yǎng)基 李斯特氏菌檢測培養(yǎng)基 弧菌檢測培養(yǎng)基 乳酸菌、雙歧桿菌檢測培養(yǎng)基 酵母、霉菌檢測培養(yǎng)基 檢測培養(yǎng)基 沙門氏菌、志賀氏菌檢驗(yàn)培養(yǎng)基 大腸菌群、糞大腸菌群、大腸桿菌及腸桿菌科檢測培養(yǎng)基 細(xì)菌總數(shù)檢測,增菌培養(yǎng)基
        抗體
        生物試劑
        細(xì)胞
        菌株
        血清
        細(xì)胞分離試劑
        試劑盒

        核糖核酸酶保護(hù)實(shí)驗(yàn)相較于Northern的優(yōu)勢與問題分析

        時間:2016-8-24閱讀:939
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        核糖核酸酶保護(hù)實(shí)驗(yàn)(Ribonuclease protection assay,RPA)是近十年發(fā)展起來的一種全新的mRNA定量分析方法。其基本原理是將標(biāo)記的特異RNA探針(32P或)與待測的RNA樣品液相雜交,標(biāo)記的特異RNA探針按堿基互補(bǔ)的原則與目的基因特異性結(jié)合,形成雙鏈RNA;未結(jié)合的單鏈RNA經(jīng)RNA酶A或RNA酶T1消化形成寡核糖核酸,而待測目的基因與特異RNA探針結(jié)合后形成雙鏈RNA,免受RNA酶的消化,故該方法命名為RNA酶保護(hù)實(shí)驗(yàn)。對于32P標(biāo)記的探針,雜交雙鏈進(jìn)行變性聚丙酰胺凝膠電泳,用放射自顯影或磷屏成像系統(tǒng)檢測被保護(hù)的探針的信號;對于標(biāo)記的探針,雜交雙鏈經(jīng)過變性聚丙酰胺凝膠電泳后電轉(zhuǎn)移至尼龍膜,采用鏈霉親和素-辣根過氧化物酶(Streptavidin-HRP)和化學(xué)發(fā)光底物與膜上biotin標(biāo)記的探針結(jié)合,X射線膠片或化學(xué)發(fā)光圖像分析儀檢測雜交信號。

        RPA是一種有力的工具,可用于檢測在總RNA混合物中特定mRNA分子的表達(dá)。盡管操作比較復(fù)雜,但是這種方法可以在一次檢測中分析多達(dá)25樣品。敏感性和高通量的優(yōu)點(diǎn)使得RPA在病原體的發(fā)現(xiàn)中顯得非常有用。由RPA得到的結(jié)果,結(jié)合普通的形態(tài)學(xué)技術(shù)有助于闡明疾病的發(fā)生過程。

        RPA有Northern blot*的優(yōu)勢:

        1.過量的探針與目的基因的雜交在液相環(huán)境完成,反應(yīng)更加*

        2.RPA比Northern Blot靈敏15-150倍,適合檢測各種表達(dá)水平之基因

        3.RPA通量高,同時檢測多個基因,可評價他們在同一情況下的差異表達(dá)

        4.一次RPA就能完成10 多次Northern Blot的工作,加快研究速度

        這個方法的的主要缺點(diǎn)如下:

        1.這個實(shí)驗(yàn)的前提是你必須首先要把要研究的基因克隆于一個載體,要清楚插入片段的方向,該載體插入片段兩側(cè)有T3、T7或SP6的啟動子位點(diǎn)。載體先要用合適的內(nèi)切酶線性化,選擇正確的體外轉(zhuǎn)錄試劑盒,轉(zhuǎn)錄出要研究的mRNA 的互補(bǔ)鏈,再純化。總之RNA探針的制備夠麻煩。

        2.核酸酶消化時,酶量的控制困難,容易消化過頭,X片上什么都沒有。

        3.要用放射性同位素。從事生物研究的人誰不接觸放射性物質(zhì)?但是該方法中不同于一般的探針標(biāo)記,體積小,防護(hù)容易。它需要做垂直板狀PAGE,還要漂洗固定,粘有放射性的物質(zhì)太多,如電泳的緩沖液、電泳槽、玻璃板、漂洗固定液及托盤。這還沒有算上RNA探針標(biāo)記及隨后的純化過程。

        可能出現(xiàn)的問題及應(yīng)對措施:

        1.No Discrete Bands, Only Smears--RNA degraded, or the the RNase Digestion was too harsh.Try reducing the concentration of RNase A to 1 mg/ml or digest for a shorter period of time. Check your RNA for condition.

        2.Bands Too Large, High Molecular Weight Artifacts--The RNase Digestion was inefficient and unable to effectively trim down the RNA:RNA duplexes.Try RNasing longer or increasing the RNase concentration. /Incompley linearized template DNA.

        3.Bands in the Negative Control Lane-- Inefficent RNase Digestion (see above)/Sense template contaminating riboprobe/Insufficent DNase digestion of riboprobe.

        4.Many Lower Molecular Weight Bands Under the Main Band--There can either be premature stop sites in the probe leading to smaller probe sizes, therefore smaller products. This can also stem from overdigestion by RNase A which will break-up the duplexes if the concentration or digestion time is too long.

        5.No Signal At All: You did generate an antisense probe right?

        RPA和SAGE的相同點(diǎn)和不同點(diǎn):

        兩者的相同點(diǎn)都在于根據(jù)不同的RNA分子有不同的特征序列,以此為依據(jù),分析基因的表達(dá)情況;兩者的不同點(diǎn)在于,具體檢測RNA的原理不一樣,相比較而言,前者利用RNase只消化單鏈RNA(即未與RNA probe結(jié)合的RNA分子)的特性,定性兼半定量分析特定(視合成的probe)基因的表達(dá),后者是基于只需14bp長的核酸序列即可代表一個RNA分子,用擴(kuò)增的方式,定性的研究可以檢測到一個細(xì)胞內(nèi)所有轉(zhuǎn)錄體的表達(dá)

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