Ets轉錄因子家族ets1抗體

Western bloting的操作（間接法）
1、        蛋白質樣品（抗原）的制備：
①  細胞的處理方法：向收集到的細胞中加入RIPA裂解緩沖液（三中蛋白酶抑制在使用前加入，終濃度為2ug/ml）在冰上裂解30—60min，然后再插入冰盒進行超聲，超聲強度以不產生泡沫為準，超聲每次2-3秒，重復3-4次，再離心12000rpm3-5min，吸取上清備用。（超聲強度不能過大，防止蛋白碳化）
組織的處理方法：按實驗要求將組織從動物體內取出（樣品不宜反復凍融），取少量（1-2g左右）放入玻璃勻槳器中研磨成勻漿，然后轉入EP管中進行超聲，超聲強度以不產生泡沫為準，超聲每次5-7秒，重復5-6次，再離心12000rpm3-5min，吸取上清備用。
②上述兩種方法得來的樣品處理液還要加入1/4體積左右的上樣Buffer，然后放在沸水浴中加熱3-4min使蛋白變性，方可作為樣品點樣。（注意：在加熱組織裂解液時，肝臟和腎臟組織要特別注意其本身濃度，是在制作裂解液時就適當稀釋，否則加熱后會凝結成固態。還有些組織處理后很粘稠，有帶絲狀物，這是未裂解的核酸，可以適當離心后再用。）
2、        SDS-聚丙烯酸胺凝膠電泳（SDS－PAGE）
①根據要求配制好SDS-聚丙烯酸胺凝膠（一般釆用10%的SDS－PAGE）
②將已配制好的凝膠裝入電泳儀中（注意不要漏液）。
③設計加樣順序，作好實驗記錄，按預定順序加樣。一般裂解液我們按10-20ul/道點樣，重組蛋白按1-2ug/道點樣。
④把電泳裝置與電源連接好，將電壓調至100V電泳10-20min，待溴酚藍遷移出積層膠位置再換用200V，30-40min后關閉電源。
⑤從電泳裝置上卸下凝膠玻璃板，用水沖洗干凈，準備轉膜。
4．轉膜（濕轉）
① 將凝膠玻璃板置于盛有電泳轉移緩沖液的容器中，浸泡幾分鐘。
② 帶上手套，準備好濾紙和NC膜（83mm×75mm），盡量避免污染濾紙和膜，將裁減好的濾紙和膜浸泡與電泳轉移緩沖液中，驅除留于膜上的氣泡。
③ 打開轉移盒并放置淺盤中，用轉移緩沖液將海綿墊*浸透后將其放在轉移盒壁上，海綿上再放置一張浸濕的濾紙。
④ 按“海綿—濾紙—凝膠—NC膜—濾紙—海綿”的順序裝置好（注意不能有氣泡且裝置電極槽不能放反） Ets轉錄因子家族ets1抗體 
⑤將冰盒裝入緩沖液槽，注滿4℃預冷的轉移緩沖液。
⑥將整個裝置放在冰浴中用磁力攪拌器攪拌，連接好轉移電極恒流300mA轉移90min。電轉完畢后，將NC膜作好記號置于5%的脫脂奶粉（PBS配制）中封閉，37℃2小時或4℃過夜。
5．加一抗與抗原結合
①將加樣槽洗滌干凈，將膜用一次性手套覆蓋好，按標記和實驗設計切下膜條并作好記號，按順序置于加樣槽中加入相應的一抗約1ml，注意保證膜的所有部分同溶液接觸。
②室溫下于搖床孵育2h或4℃過夜。
③棄去一抗，膜條仍置于加樣槽，每個槽中的膜用PBST在搖床洗滌洗滌5min左右 ，換液，反復4-5次。
6．加二抗與一抗的結合
① 根據實驗需要和設計選擇合適的酶標二抗和稀釋濃度（PBS稀釋），每個加樣槽中加入二抗1ml左右室溫下于搖床孵育1h，注意保證膜的所有部分同溶液接觸。
②棄去二抗，膜條仍置于加樣槽，每個槽加PBST在搖床洗滌洗滌5min左右，換液反復4-5次。
7．顯色反應（重組蛋白一般用AP顯色或是DAB顯色，裂解液一般用發光法）
① HRP標記二抗用DAB顯色，按順序依次將DAB三種劑各取3滴于5ml蒸餾水中，避光混勻，將膜加入顯色液中避光顯色5-15min終止反應，對照Marker記錄實驗結果，將NC膜晾干掃描保存
②        AKP標記二抗用AP顯色，在10mlAKP緩沖液中加入66µlNBT溶液和33µl BCIP溶液混勻，室溫下將膜放入顯色（37℃可加速反應）5-15min。對照Marker記錄實驗結果，將NC膜晾干掃描保存。
③底物發光法：將兩種顯色底物1：1等體積混合后將其覆蓋在膜表面使其均勻，用玻璃膠片把膜包起來，馬上在暗室中將X光片覆蓋在膜的上面（時間根據光的亮度來衡量），顯影、定影。（熒光在一段時間后會越來越弱要控制好時間）