乳酸脫氫酶(lactate dehydrogenase，LDH)是細胞能量代謝(糖酵解)中的一個重要的酶，可以催化乳酸生成丙酮酸，同時產生ATP。正常情況下LDH不能透過細胞膜，但當細胞受損或死亡時，細胞膜通透性增強，LDH會從胞漿中露出，細胞質內LDH減少，培養液中LDH增多。因此LDH是質膜完整性的標志，也是檢測細胞活性的指標，培養液中LDH越高就說明細胞損傷越嚴重。

    LDH在有輔酶I攜帶氫的情況下，催化乳酸與丙酮酸之間的可逆反應。在pH 10的條件下，以乳酸為基質，經LDH作用后，測定生成的丙酮酸量，從而推知LDH的活性。

(一)材料

1．96孔培養板培養的待測細胞和對照細胞培養上清液。

2．0．1mol／L*緩沖液、甘油酸7．505g、NaCl 5．85g，溶于雙蒸水至1000ml。

3．緩沖基質液(pH 10．O)：70％*10ml，0．1mol／L*緩沖液125ml，0．1mol／L NaOH 75ml，加氯仿數滴防腐，4℃保存備用。

4．輔酶I溶液：輔酶I 10mg溶于2ml雙蒸水中，4℃保存備用。

5．2，4一二硝基苯肼溶液：20mg 2，4一二硝基苯肼溶于10ml 10mol／L HCl中后，用蒸餾水定容至100ml，4℃保存備用。

6．丙酮酸標準液：準確稱取干燥至恒重的丙酮酸11mg，用0．1mol／L H2SO4溶解后定容至100ml，4℃保存備用。此標準液相當于lμmol／L丙酮酸。

(二)方法

1．繪制標準曲線，按表8-1操作。

    將各試管置于37℃水浴15min后，各管加入0．4 mol／L NaOH 10ml，混勻后室溫放置5min，以1號管為空白，將試管分別于440nm測定各孔光吸收值，記錄結果。以LDH量為橫坐標，各管吸光密度值為縱坐標，繪制標準曲線。

2．培養液中LDH測定，操作見表8—2。

(三)結果分析

    混勻后室溫下放置5min，以對照管為空白，440nm比色。根據標準曲線確定細胞培養液中的LDH活性。本法操作簡便快捷，自然釋放率低，可用于CTL及NK細胞活性測定及藥物、化學物質或放射引起的細胞毒性，現已有LDH法測定CTL活性試劑盒。

(四)注意事項

1．各管吸光密度值若過高，應對細胞培養液進行稀釋。

2．確保每管的反應時間一致。