轉染 ，是將外源性基因導入細胞內的一種專門技術。隨著基因與蛋白功能研究的深入，轉染目前已成為實驗室工作中經常涉及的基本方法。轉染大致可分為物理介導、化學介導和生物介導三類途徑。電穿孔法、顯微注射和基因槍屬于通過物理方法將基因導入細胞的范例；化學介導方法很多，如經典的磷酸鈣共沉淀法、脂質體轉染方法、和多種陽離子物質介導的技術；生物介導方法，有較為原始的原生質體轉染，和現在比較多見的各種病毒介導的轉染技術。

    理想細胞轉染方法，應該具有轉染效率高、細胞毒性小等優點。病毒介導的轉染技術，是目前轉染效率zui高的方法，同時具有細胞毒性很低的優勢。但是，病毒轉染方法的準備程序復雜，常常對細胞類型有很強的選擇性，在一般實驗室中很難普及。其它物理和化學介導的轉染方法，則各有其特點。 需要指出的一點，無論采用哪種轉染技術，要獲得*的轉染結果，可能都需要對轉染條件進行優化。影響轉染效率的因素很多，從細胞類型、細胞培養條件和細胞生長狀態，到轉染方法的操作細節，都需要考慮。
    一、細胞傳代

     1. 試驗準備：200ul/1mlTip頭各一盒（以上物品均需高壓滅菌），酒精棉球，廢液缸，試管架，微量移液器，記號筆，培養皿，離心管。

     2. 棄掉培養皿中的培養基，用1ml的PBS溶液洗滌兩次。

     3. 用Tip頭加入1ml Trypsin液，消化1分鐘（37℃，5%CO2 ）。用手輕拍培養瓶壁，觀察到細胞*從壁上脫落下來為止。

      4. 加入1ml的含血清培養基終止反應。

      5. 用Tip頭多次吹吸，使細胞*分散開。

      6. 將培養液裝入離心管中，1000rpm離心5min。

      7. 用培養液重懸細胞，細胞計數后選擇0.8X106個細胞加入一個35mm培養皿。

      8. 將合適體積*培養液加入離心管中，混勻細胞后輕輕加入培養皿中，使其均勻分布。

      9. 將培養皿轉入CO2培養箱中培養，第二天轉染。
 二、細胞轉染

     1. 轉染試劑的準備 ① 將400ul去核酸酶水加入管中，震蕩10秒鐘，溶解脂狀物。 ② 震蕩后將試劑放在－20攝氏度保存，使用前還需震蕩。

     2. 選擇合適的混合比例（1：1－1：2/脂質體體積：DNA質量）來轉染細胞。在一個轉染管中加入合適體積的無血清培養基。加入合適質量的MyoD或者EGFP的DNA，震蕩后在加入合適體積的轉染試劑，再次震蕩。

     3. 將混合液在室溫放置10―15分鐘。

     4. 吸去培養板中的培養基，用PBS或者無血清培養基清洗一次。

     5. 加入混合液，將細胞放回培養箱中培養一個小時。

    6. 到時后，根據細胞種類決定是否移除混合液，之后加入*培養基繼續培養24－48小時。
三、第二次細胞傳代

    1. 在轉染后24小時，觀察實驗結果并記錄綠色熒光蛋白表達情況。

    2. 再次進行細胞傳代，按照免疫染色合適的密度0.8X105個細胞/35mm培養皿將細胞重新轉入培養皿中。

     3. 在正常條件下培養24小時后按照染色要求條件固定。